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高中生物实验。
有部分实验我个人认为不太重要，所以并没有写上去。如有需要补充的实验，欢迎各位指出。
编辑于2022-07-16 14:01:45- 相似推荐
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高中生物实验。
显微镜的使用。
低倍镜：取镜→安放→对光→压片→调焦→观察。
①在低倍镜下观察，找到物像，并调节至清晰。
②移动装片将物象移至视野中央。
③移动转换器，换成高倍物镜。
④调焦：移动细准焦螺旋，直到看清物象为止；若视野暗可调节反光镜（凹亮平暗）或光圈，增强进光量。
成像：上下左右颠倒。eg：上编上移。
还原糖的检验。
还原糖：单糖，乳糖，麦芽糖等。
试剂：斐林试剂。
甲液：质量浓度为0.1g/ml的Na0H溶液。乙液：质量浓度为0.05g/ml的硫CuSO₄溶液。
方法步骤。
①向试管内注射2ml待测组织样液。
②向试管内注射1ml斐林试剂。（甲液和乙液等量混合均匀后再注入）
现配现用，混合使用。
③将试管放入盛有50~65℃的温水大烧杯中加热约2min 。
水浴加热。
④观察试管中出现的颜色变化。
蓝色斐林试剂→产生砖红色沉淀。
脂肪的检验。
试剂：苏丹Ⅲ（0.01g/ml）
方法步骤。
①制作花生子叶临时切片，用显微镜观察子叶细胞的着色情况。
②取材：取用一粒浸泡过的花生种子，去掉种皮。
③切片：用刀片在花生子叶的横断面上平行切下若干薄片，放入盛有清水的培养皿中代用。
④制片从培养皿中选取最薄的切片，用毛笔蘸取放在载玻片中央；在花生子叶薄片上滴2~3滴苏丹Ⅲ染液，在滴加1~2滴体积分数为50%的酒精溶液洗去浮色；用吸水纸吸去花生子叶周围的酒精，滴一滴蒸馏水，盖上盖玻片制成临时装片。
⑤观察，在低倍镜下找到花生企业的最薄处，移到视野中央，将物象调节清晰；换高倍镜观察，在视野中被染成橘黄色的脂肪颗粒，清晰可见。
脂肪被苏丹Ⅲ染液染成橘黄色。
蛋白质的检验。
试剂：双缩尿试剂。
A液：质量浓度为0.1g/ml的NaOH溶液。 B液：质量浓度为0.01g/ml的CuSO₄溶液。
方法步骤。
①向试管内注射待测组织样液2g/ml 。
②向试管内注入双缩脲试剂A液1ml，摇匀。
③向试管内注入双酸钠试剂B液4滴，摇匀。
④观察组织样液颜色的变化。
双缩脲试剂B液浅蓝色→双缩尿试剂+蛋白质=呈紫色。
酵母菌细胞呼吸的方式。
要点。
①CO₂可使澄清的石灰水变浑浊，也可使溴色香草酚溶液由蓝变绿，再变黄。根据石灰水混浊程度或秀色香草芬兰溶液变成黄色的时间长短可检测酵母菌培养液中二氧化碳的产生情况。
检测酒精的产生：橙色的重铬酸钾溶液在酸性条件下与乙醇发生化学反应，变成灰绿色。由于葡萄糖也能与酸性重铬酸钾反应因此应将酵母菌的培养时间适当延长以耗尽溶液中的葡萄糖。
色素的提取与分离。
实验原理。
提取：有机溶剂（eg 无水乙醇）能溶解色素。
分离:色素在层析液中的溶解度不同，在滤纸条上扩散的速度不同。（纸层析法）
方法步骤。
1.提取叶绿中的色素。
①称取5克叶绿，剪去主叶脉，剪碎，放入研钵中。
②向研钵中放入少许二氧化硅（有助于研磨的充分）和碳酸钙（防止研磨中色素被破坏），再加入5~10毫升无水乙醇，迅速充分地进行研磨。
③将研磨液迅速倒入玻璃漏斗（漏斗基部放一块单层尼龙布）进行过滤，将滤液收集，到试管中及时用棉，塞将试管口塞严
2.制备滤纸条。
2.将干燥的定性滤纸剪成宽度略小于试管直径、长度略小于试管长度的滤纸条，再将滤纸条，一端剪去两角，并在距这一端底部1cm处用铅笔画一条细的直线。
3.画滤液细线——细，齐，直，匀
用毛细吸管吸取少量滤液沿铅笔线均匀的画出一条细线（也可将滤液倒入培养皿，再用盖玻片，蘸取滤液，在横线处按压出均匀的细线），待绿叶干后再重新画1~2次。
4.分离叶绿中的色素。
将适量的尘吸液倒入试管中，将滤纸条（有滤液细线的一端）轻轻插入层析液中，随后用棉塞塞紧试管口。注：不能让滤液细线触及层析液，否则滤液细线中的色素会被层析液溶解不能在滤纸上扩散。也可用小烧杯代替试管，用培养皿盖住小烧杯。
5.记录与观察。
观察试管内滤纸条上出现了几条色素带以及每条色素带的颜色和宽窄。
观察根尖分生区组织细胞的有丝分裂。
要点。
①染色体容易被碱性染料（eg 甲紫溶液，俗称龙胆紫溶液）着色。
②装片制作流程：解离→漂洗→染色→制片。
解离。
用药液使组织中的细胞相互分离开来。（15%的盐酸和90%的酒精，1:1混合）
漂洗。
洗去药液防止解离过度。（放入清水的玻璃皿中漂洗）
染色
甲紫溶液或醋酸洋红溶液能使染色体着色。（0.01g/ml或0.02g/ml的甲酯溶液）
制片。
使细胞分散开来有利于观察。
低温诱导植物细胞染色体数目的变化。
实验原理。
抑制纺锤体的形成。
方法步骤。
诱导培养。
培养不定根。
低温诱导。
固定细胞形态。
剪取诱导处理的根尖0.1~1cm放入卡诺试液（固定细胞的形态）中，浸泡0.5~1h，然后用体积分数为95%的酒精冲洗两次。
制作装片
解离→漂洗→染色→装片。
观察。
制作发酵食品。
泡菜制作。
①配置盐水。
用清水和食盐配置质量分数为5%~20%的盐水（浓度过高抑制发酵浓度过低，杂菌易繁殖），并将盐水煮沸（杀死杂菌，除去水中的溶解氧）、冷却（防止水温过高杀死痰内的乳酸菌）待用。
②原料处理。
将新鲜蔬菜洗净，切成块状或条状混合均匀。
③装坛
晾干后装入泡菜坛内，装置半坛时放入香料至八成满。将冷却好的盐水缓缓倒入坛中，使盐水没过全部材料盖好坛盖
④封坛发酵。
向坛盖边沿的水槽中注满水（创造无氧环境），并在发酵过程中注意经常向水槽中补充水。
果酒果醋制作。
①挑选冲洗葡萄。
②榨汁装瓶。
用榨汁机榨取葡萄汁，将葡萄汁装入发酵瓶中，盖好瓶盖。注：要留有大约1/3的空间。
③果酒发酵。
将温度控制在18~30℃进行发酵，在发酵过程中，每隔12h左右将瓶盖拧松一次（及时排出二氧化碳，防止发酵瓶炸裂）。注：不是打开瓶盖（防止杂菌、CO₂）。此后再拧紧瓶盖发酵10~12 d
④取样检测。
⑤果醋发酵。
葡萄酒制作完成后，打开瓶盖盖上一层纱布进行葡萄醋的发酵，发酵温度为30~35℃，时间为7~8d
DNA的粗提取与鉴定。
实验原理。
DNA不溶于酒精，但某些蛋白质溶于酒精。
DNA在不同浓度的NaCl溶液中溶解度不同。
鉴定。
在一定温度下DNA与二苯胺试剂会呈现蓝色，因此二苯胺试剂可作为鉴定DNA的试剂。
DNA+二苯胺沸水浴→蓝色。
方法步骤。
①称取约30克洋葱切碎，然后放入研钵中倒入10毫升研磨液，充分研磨（切碎细胞膜释放DNA）。
②在漏斗中垫上纱布，将洋葱研磨液过滤到烧杯中，在4℃冰箱中放置几分钟后再取上清液。（或直接将研磨液倒入塑料离心管中，在1500r/min 的转速下，离心5min 再取上清液，倒入烧杯中）
③在上清液中加入体积相等的、预冷的酒精溶液（体积分数约95%），静置2~3，溶液中出现的白丝状物就是粗体区的DNA。用玻璃棒沿一个方向搅拌，卷起丝状物，并用滤纸吸去上面的水分（或者将溶液倒入塑料离心管中，在在10000r/min 的转速下离心5min ），弃上清液，将管底的沉淀物（粗提取的DNA）晾干。
④取两只20毫升的试管，各加入2mol /L的氯化钠溶液5毫升。将丝状物（或沉淀物）溶于其中一支试管的氯化钠溶液中。然后向两支试管中各滴加4毫升的二苯胺试剂。混合均匀后，将试管至于沸水中加热5分钟。待试管冷却后，比较两支试管中溶液颜色的变化。
高中生物实验。
显微镜的使用。
低倍镜：取镜→安放→对光→压片→调焦→观察。
①在低倍镜下观察，找到物像，并调节至清晰。
②移动装片将物象移至视野中央。
③移动转换器，换成高倍物镜。
④调焦：移动细准焦螺旋，直到看清物象为止；若视野暗可调节反光镜（凹亮平暗）或光圈，增强进光量。
成像：上下左右颠倒。eg：上编上移。
还原糖的检验。
还原糖：单糖，乳糖，麦芽糖等。
试剂：斐林试剂。
甲液：质量浓度为0.1g/ml的Na0H溶液。乙液：质量浓度为0.05g/ml的硫CuSO₄溶液。
方法步骤。
①向试管内注射2ml待测组织样液。
②向试管内注射1ml斐林试剂。（甲液和乙液等量混合均匀后再注入）
现配现用，混合使用。
③将试管放入盛有50~65℃的温水大烧杯中加热约2min 。
水浴加热。
④观察试管中出现的颜色变化。
蓝色斐林试剂→产生砖红色沉淀。
脂肪的检验。
试剂：苏丹Ⅲ（0.01g/ml）
方法步骤。
①制作花生子叶临时切片，用显微镜观察子叶细胞的着色情况。
②取材：取用一粒浸泡过的花生种子，去掉种皮。
③切片：用刀片在花生子叶的横断面上平行切下若干薄片，放入盛有清水的培养皿中代用。
④制片从培养皿中选取最薄的切片，用毛笔蘸取放在载玻片中央；在花生子叶薄片上滴2~3滴苏丹Ⅲ染液，在滴加1~2滴体积分数为50%的酒精溶液洗去浮色；用吸水纸吸去花生子叶周围的酒精，滴一滴蒸馏水，盖上盖玻片制成临时装片。
⑤观察，在低倍镜下找到花生企业的最薄处，移到视野中央，将物象调节清晰；换高倍镜观察，在视野中被染成橘黄色的脂肪颗粒，清晰可见。
脂肪被苏丹Ⅲ染液染成橘黄色。
蛋白质的检验。
试剂：双缩尿试剂。
A液：质量浓度为0.1g/ml的NaOH溶液。 B液：质量浓度为0.01g/ml的CuSO₄溶液。
方法步骤。
①向试管内注射待测组织样液2g/ml 。
②向试管内注入双缩脲试剂A液1ml，摇匀。
③向试管内注入双酸钠试剂B液4滴，摇匀。
④观察组织样液颜色的变化。
双缩脲试剂B液浅蓝色→双缩尿试剂+蛋白质=呈紫色。
酵母菌细胞呼吸的方式。
要点。
①CO₂可使澄清的石灰水变浑浊，也可使溴色香草酚溶液由蓝变绿，再变黄。根据石灰水混浊程度或秀色香草芬兰溶液变成黄色的时间长短可检测酵母菌培养液中二氧化碳的产生情况。
检测酒精的产生：橙色的重铬酸钾溶液在酸性条件下与乙醇发生化学反应，变成灰绿色。由于葡萄糖也能与酸性重铬酸钾反应因此应将酵母菌的培养时间适当延长以耗尽溶液中的葡萄糖。
色素的提取与分离。
实验原理。
提取：有机溶剂（eg 无水乙醇）能溶解色素。
分离:色素在层析液中的溶解度不同，在滤纸条上扩散的速度不同。（纸层析法）
方法步骤。
1.提取叶绿中的色素。
①称取5克叶绿，剪去主叶脉，剪碎，放入研钵中。
②向研钵中放入少许二氧化硅（有助于研磨的充分）和碳酸钙（防止研磨中色素被破坏），再加入5~10毫升无水乙醇，迅速充分地进行研磨。
③将研磨液迅速倒入玻璃漏斗（漏斗基部放一块单层尼龙布）进行过滤，将滤液收集，到试管中及时用棉，塞将试管口塞严
2.制备滤纸条。
2.将干燥的定性滤纸剪成宽度略小于试管直径、长度略小于试管长度的滤纸条，再将滤纸条，一端剪去两角，并在距这一端底部1cm处用铅笔画一条细的直线。
3.画滤液细线——细，齐，直，匀
用毛细吸管吸取少量滤液沿铅笔线均匀的画出一条细线（也可将滤液倒入培养皿，再用盖玻片，蘸取滤液，在横线处按压出均匀的细线），待绿叶干后再重新画1~2次。
4.分离叶绿中的色素。
将适量的尘吸液倒入试管中，将滤纸条（有滤液细线的一端）轻轻插入层析液中，随后用棉塞塞紧试管口。注：不能让滤液细线触及层析液，否则滤液细线中的色素会被层析液溶解不能在滤纸上扩散。也可用小烧杯代替试管，用培养皿盖住小烧杯。
5.记录与观察。
观察试管内滤纸条上出现了几条色素带以及每条色素带的颜色和宽窄。
观察根尖分生区组织细胞的有丝分裂。
要点。
①染色体容易被碱性染料（eg 甲紫溶液，俗称龙胆紫溶液）着色。
②装片制作流程：解离→漂洗→染色→制片。
解离。
用药液使组织中的细胞相互分离开来。（15%的盐酸和90%的酒精，1:1混合）
漂洗。
洗去药液防止解离过度。（放入清水的玻璃皿中漂洗）
染色
甲紫溶液或醋酸洋红溶液能使染色体着色。（0.01g/ml或0.02g/ml的甲酯溶液）
制片。
使细胞分散开来有利于观察。
低温诱导植物细胞染色体数目的变化。
实验原理。
抑制纺锤体的形成。
方法步骤。
诱导培养。
培养不定根。
低温诱导。
固定细胞形态。
剪取诱导处理的根尖0.1~1cm放入卡诺试液（固定细胞的形态）中，浸泡0.5~1h，然后用体积分数为95%的酒精冲洗两次。
制作装片
解离→漂洗→染色→装片。
观察。
制作发酵食品。
泡菜制作。
①配置盐水。
用清水和食盐配置质量分数为5%~20%的盐水（浓度过高抑制发酵浓度过低，杂菌易繁殖），并将盐水煮沸（杀死杂菌，除去水中的溶解氧）、冷却（防止水温过高杀死痰内的乳酸菌）待用。
②原料处理。
将新鲜蔬菜洗净，切成块状或条状混合均匀。
③装坛
晾干后装入泡菜坛内，装置半坛时放入香料至八成满。将冷却好的盐水缓缓倒入坛中，使盐水没过全部材料盖好坛盖
④封坛发酵。
向坛盖边沿的水槽中注满水（创造无氧环境），并在发酵过程中注意经常向水槽中补充水。
果酒果醋制作。
①挑选冲洗葡萄。
②榨汁装瓶。
用榨汁机榨取葡萄汁，将葡萄汁装入发酵瓶中，盖好瓶盖。注：要留有大约1/3的空间。
③果酒发酵。
将温度控制在18~30℃进行发酵，在发酵过程中，每隔12h左右将瓶盖拧松一次（及时排出二氧化碳，防止发酵瓶炸裂）。注：不是打开瓶盖（防止杂菌、CO₂）。此后再拧紧瓶盖发酵10~12 d
④取样检测。
⑤果醋发酵。
葡萄酒制作完成后，打开瓶盖盖上一层纱布进行葡萄醋的发酵，发酵温度为30~35℃，时间为7~8d
DNA的粗提取与鉴定。
实验原理。
DNA不溶于酒精，但某些蛋白质溶于酒精。
DNA在不同浓度的NaCl溶液中溶解度不同。
鉴定。
在一定温度下DNA与二苯胺试剂会呈现蓝色，因此二苯胺试剂可作为鉴定DNA的试剂。
DNA+二苯胺沸水浴→蓝色。
方法步骤。
①称取约30克洋葱切碎，然后放入研钵中倒入10毫升研磨液，充分研磨（切碎细胞膜释放DNA）。
②在漏斗中垫上纱布，将洋葱研磨液过滤到烧杯中，在4℃冰箱中放置几分钟后再取上清液。（或直接将研磨液倒入塑料离心管中，在1500r/min 的转速下，离心5min 再取上清液，倒入烧杯中）
③在上清液中加入体积相等的、预冷的酒精溶液（体积分数约95%），静置2~3，溶液中出现的白丝状物就是粗体区的DNA。用玻璃棒沿一个方向搅拌，卷起丝状物，并用滤纸吸去上面的水分（或者将溶液倒入塑料离心管中，在在10000r/min 的转速下离心5min ），弃上清液，将管底的沉淀物（粗提取的DNA）晾干。
④取两只20毫升的试管，各加入2mol /L的氯化钠溶液5毫升。将丝状物（或沉淀物）溶于其中一支试管的氯化钠溶液中。然后向两支试管中各滴加4毫升的二苯胺试剂。混合均匀后，将试管至于沸水中加热5分钟。待试管冷却后，比较两支试管中溶液颜色的变化。