导图社区 分化流程
人多能干细胞分化成黑色素细胞的过程,包括细胞培养,细胞传代等多种重要步骤类型,方法适用任何实验,放心复制。
编辑于2024-10-19 10:09:56
十、黑色素细胞的保存(30min)
1、分离黑色素细胞
根据黑色素细胞传代的1-3步
2、测定活细胞密度。在4℃下300×g离心5min,弃上清
3、用合适的冷冻培养基(90%FBS加上10%DMSO)的体积重悬沉淀,将细胞悬液等分到冷冻瓶中
4、将小瓶放入梯度冷冻箱中,并储存在-80℃
5、24h后,将冷冻细胞转移到液氮中
分化流程
黑色素细胞的分化(5-6 weeks)
九、黑色素细胞的传代(30min)
1、单细胞分离前1h,准备好涂有fibronectin的板.当细胞达到90%融合的时候,吸出并丢弃培养基,轻轻地用DPBS清洗细胞
2、对于60mm培养盘,加600μLTrypLE Express Enzyme,确保完全覆盖在细胞上。在15-25℃下孵育1-2min,使用显微镜不断看细胞形态
3、当黑色素细胞形成一个圆形,轻轻地敲击培养瓶以分离细胞,加2mlDMEM(low glucose)去稀释酶,避免吸到底部(底部可能有碎片),将全部上清转移到15ml的圆锥孔中。用2ml新的DMEM去洗培养盘以收集剩余的细胞,加到相同的圆锥孔中
4、在4℃下300×g离心5min,弃上清。用黑色素分化培养基(加0.5%FBS但不含TPA)重悬沉淀
5、进行细胞计数,将黑色素细胞以2×104/cm2的密度转移到新的准备好的涂有fibronectin的培养板上
八、单细胞分离(30min)
1、在单细胞分离1h之前,准备涂有fibronectin的板
2、吸出并丢弃培养基,用DPBS轻轻地洗细胞后丢弃。对于六孔板的每个孔,加600μLTrypLE Express Enzyme,确保完全覆盖在培养基上
3、在15-25℃下孵育2-3min,在显微镜下经常观察。
4、当分化的细胞变圆时,加2mlDMEM(low glucose)去稀释酶,轻轻吹吸细胞,将全部上清转移到15ml的圆锥管中。用另外2ml的DMEM清洗板,将残余的细胞加入相同的圆锥管中,静置2-3min,使聚集物沉淀
5、小心地收集圆锥管上部的上清,在4℃300×g离心5分钟。弃掉上清,用黑色素细胞分化培养基(加0.5%FBS,无TPA)重悬颗粒
6、细胞计数,将黑色素细胞按照2×104/cm2的密度放在涂有fibronectin的板上
每2-3天更换培养基,当细胞融合度达到90%时传代
七、早期分化阶段(3 weeks)
1、选择已经分化好的EB,将其转移到15ml的圆锥管中,静置2-3min,使聚集物沉淀,小心地去除上清
2、在黑色素细胞分化培养基中重悬EBs,将其转移到低吸附的各个六孔板中。(对于6孔板的每个孔,20个EBs是接受的)
每2-3天半换培养基
3、两周后,收集分化好的EBs,并将它们转移到涂有fibronectin的板中。(对于六孔板的每个孔,10个EBs是接受的)
4、使用黑色素细胞分化培养基继续分化7天
每2-3天半换培养基
一、解冻小鼠成纤维细胞(50min)
60mm dish
37℃孵育30min
吸出gelatin并丢弃
3、添加5ml DMEM(high glucose)&10%FBS
4、37℃孵育12-24h
细胞密度至少达到70%-80%融合
EB的生成(1 week)
六、使用单细胞形成EB(60min)
1、吸出培养在无饲养层条件下的iPSCs,用DMEM/F12清洗细胞并丢弃
2、在六孔板的每个孔中加入600μL的ACCUTASEÔ
3、在15-25℃下孵育4-6min,经常在显微镜下观察细胞形态
4、当细胞边缘变圆的时候,去除ACCUTASEÔ
5、加2ml的DMEM/F12,轻轻吹吸细胞,使它们分离成单细胞
6、将全部悬浮液转移到15ml 圆锥管中,用另外2ml的DMEM/F12收集剩余的悬浮液,再加到相同的圆锥管中
7、在4℃下300×g离心5min,弃上清
8、用1mlAggreWell EB形成培养基垂悬颗粒
9、进行细胞计数,将2.5-5×105个细胞放到ElplasiaTM plate (24-well)的每个孔中,加入额外的培养基直到体积为2ml,最后加入Y-27632到最后的体积为10μL,确保细胞均匀分布
10、在37℃孵育器下培养
11、24h之后,轻轻地吹吸ElplasiaÔ板的底部,是聚集物漂浮
12、收集聚集物溶液并转移到15ml的圆锥管中,让圆锥管放置2-3min,使聚集物沉淀
13、小心地吸出上清液,去除Y-27632
14、用新的AggreWell EB形成培养基轻轻地垂悬聚集物,并将它们转移到每个含有2ml超低附着的板上
每天更换培养基
iPSC准备(2 weeks)
五、使用聚集物形成EB(30min)
1、将基于MEF条件培养的iPSCs分离成小的聚集物
按照第三步iPSCs传代1~9步进行 注意:不要把iPSCs分离成太小的聚集物或单细胞
2、弃上清,加2mlhES培养基(不含有bFGF),轻轻垂悬
3、将聚集物转移到超低附着的培养板上,加Y-27632定容到10μL
4、24h后,选择聚集物,将它们转移到15ml的圆锥管中
5、在15-25℃ 200×g下离心30s去沉淀聚集物
6、抽出上清,以去除Y-27632
7、用新的hES培养基(不含bFGF)小心垂悬聚集物,将它们转移到含有2ml培养基的超低附着的孔中
每天更换培养基
四、iPSCs传代(Feeder-Free Condition)(60min)
1、准备涂有明胶的板
2、弃去培养基溶液,用2ml提前冷好的DMEM/F12培养基清洗
3、加600μL的ReLeSR,确保全部覆盖在培养基里面,1min后去除
4、在15-25℃下孵育并观察
5、在5-8分钟后,如果细胞间有明显的裂缝,则用力敲击盘子的一侧
6、加2ml mTeSR1培养基到孔中,轻轻吹吸,使大的聚集物分离成小块
7、吸取上清到涂有明胶的孔板中(按一定比例),添加额外的培养基使每个孔达到2ml
8、在37℃孵育器中培养和摇摆
每天更换培养基
三、iPSCs传代(MEF-Based Conditions)(40 min)
1、准备mitomycin C–treated MEFs
参考二、的第1步
2、当iPSCs大约0.8-1mm时,弃去培养基溶液
3、用4mlDMEM/F12洗,洗完后丢弃
4、加700μL解离液,在15-25℃下孵育
5、当iPSCs克隆边缘卷曲模糊时,弃去解离液
6、用提前冷好的DMEM/F12洗两次后弃去
7、加4mlDMEM/F12到培养基中,轻轻吹吸,把菌落分成小块
不要用力过猛,避免将iPSCs分成单个细胞
8、将细胞悬液转移到15ml圆锥管中,用4mlDMEM/F12加入培养皿中,以收集残余的菌块
9、在4℃下200×g离心
10、弃去上清,加hES培养基后垂悬细胞
11、按比例分离细胞悬液到步骤1准备好的培养皿中
12、在37℃,5%CO2加湿培养箱中摇和培养
1、2ml 0.1% gelatin
2、mitomycin C-inactivated MEFs
二、解冻iPSCs(30min)
1、准备mitomycin C–treated MEFs
1、参考一步骤中MEFs的处理 2、用5ml提前热好的DMEM洗MEFs以去除FBS,之后去掉DMEM; 3、在每个60 mm的培养皿中加入4 mL的hES培养基,然后返回培养箱。
2、将iPSCs从液氮中拿出快速放到37℃的水浴锅中
3、垂悬后放入15ml圆锥管+5mlDMEM/F12培养基
再加1mlDMEM/F12培养基到冷冻管中,收集残余的细胞,加入到相同的圆锥管中
4、在4℃下200× g离心5min
5、去上清,+1mlhES后轻轻地垂悬
6、将细胞垂悬液加入到第一步的培养皿中
7、加入Y-27632并定容至10 μM
8、37℃孵育
每天更换(hES培养基)
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