肺部感染模型

这是一篇关于肺部感染的思维导图，主要内容有发病原因、惑沈类型、模型建立。喜欢的小伙伴们可以点个赞哦！

肺部感染

• 发病原因
  • 手术感染
  • 术后呼吸机使用
  • 术后机体抵抗力低下
  • 伤口局部炎性渗出
  • 进食吸水误吸
• 感染类型
  • 细菌性感染
    • 做痰培养明确诊断，并使用抗生素进行抗炎治疗
  • 真菌性感染
    • 明确后积极使用氟康挫等抗真菌药物治疗
  • 病毒性感染
• 模型建立
  • 免疫低下肺部感染
    • 免疫低下
      • 激素注射法
        • 环磷酰胺
          • 选择体质量16~20g的BALB/C雌性小鼠
          • 环磷酰胺80mg·kg﹣¹连续腹腔注射3d
          • 一定周期适时强化（每周剂量相同）
        • 糖皮质激素
          • 抑制作用
            • 抑制巨噬细胞对抗原的吞噬和处理
            • 小剂量糖皮质激素抑制细胞免疫
            • 大剂量则选择性作用于T细胞亚群，特别是增强Ts抑制B细胞作用，并使免疫器官脾和胸腺重量减轻
          • 氢化可的松(HY）
            • 6~8周龄的昆明种小鼠
            • 组肌内注射HY40mg/kg·bw，隔天1次
            • 注射5次后，造成小鼠免疫低下动物模型
            • 在非特异性免疫方面造模较为成功
          • 地塞米松
            • 使用地塞米松0.8mg/mL每天腹腔注射昆明小鼠0.2mL/只
            • 给药7天后造成小鼠免疫功能低下
        • 鼠白血病病毒
          • 抑制作用
            • 鼠白血病病毒属于逆转录病毒科
            • 将它接种于敏感鼠可导致脾和淋巴结增大，免疫抑制和机会性感染等症状
          • 第一种
            • 使用10%脾病毒悬液（FLV病毒），用生理盐水稀释125倍作为病毒攻击液
            • ip病毒攻击液BALB/c种小鼠0.5mL/只，成功复制出免疫低下模型
          • 第二种
            • 将所制备的L6565病毒悬液按0.1m1/只皮下注射于出生24h内的乳鼠背部
            • 次日重复注射1次，4周后成功制备出免疫低下小鼠模型
          • 第三种
            • 用C57BL/6小鼠腹腔接种LP-BM5MuLV
            • 4周后小鼠出现明显的脾肿大和免疫缺陷
            • 且症状的严重程度与接种的剂量呈正相关
        • 其他
          • 环孢素A
            • （CsA)6mg/（kg·d)，连续腹腔注射BALB/c种小鼠
            • 给药7d，腹腔注射容积为2.5m1/100g
          • 氟苯尼考
            • 通过采用氟苯尼考成功诱导BALB/c种小鼠免疫抑制模型
      • 放射法
        • 照射仪器：137C8源
          • 选择体质量30~34g的昆明种小鼠
          • 采用一次性照射
            • 照射时间
              • 3.31min—3Gy
              • 4.42min—4Gy
              • 5.52min—5Gy
        • Cor射线
          • 一次全身照射动物(吸收剂量为7Gy
          • 吸收剂量率为0.51Gy/min
    • 肺部感染
      • 气管法模型的建立
        • 气管直接滴入法
          • 肺炎克雷伯杆菌
            • 选体：SD雄性大鼠
            • 麻醉后，颈部消毒、备皮无菌操作，暴露大鼠上段气管，用1m1注射器经气管滴入菌液
            • 其中，观察组滴入0.15m1，模型组滴入0.3ml，对照组滴入相同剂量的生理盐水
            • 接种后立即竖立大鼠固定台，使大鼠保持直立位约20s，以保证接种菌液因重力作用而入肺
          • 白色念珠菌
            • 选体：质量150~180g的磁性Wister大鼠
            • 皮下注射醋酸考地松—大鼠免疫力低下
            • 麻醉、颈部备皮、消毒
            • 用手术剪暴露大鼠的上段气管
            • 用1mL注射器注射适当的白色念珠菌的菌液
            • 接种后立即竖立大鼠固定台，使大鼠保持直立位约20s
            • 并左右摇晃固定台，保证菌液均匀分布于两肺
        • 气管导管插管法
          • 幼龄SD大鼠肺炎克雷伯杆菌
            • 选体：体质量在130~150g的SD大鼠
            • 麻醉：第四天，将大鼠放入带有异氟醚棉球的小桶里进行麻醉
            • 固定大鼠，用无菌的硅导管缓慢插入大鼠气管
            • 插人一定深度后，注射0.2mL的肺炎克雷伯杆菌菌液进行接种
            • 完毕后立即竖立固定台，使大鼠保持直立位20s左右
            • 左右摇晃固定台，保证菌液分布于两肺
          • SD大鼠卡式肺孢子虫肺部感染
            • 选体：雌性SD大鼠
            • 用剂：皮下注射地塞米松磷酸钠
        • 气管针头插管法（铜绿假单胞菌）
          • 选体：质量为180～220g的SD大鼠，雌雄各半
          • 麻醉：用20%的乌拉坦1.25g·kg~麻醉，后固定
          • 用16号钝针头从口腔插入气管
          • 左右旋转体位，使分布均匀于两肺
        • 经皮气管插管法
          • 选体：质量为2.0～2.5kg中国本种兔
          • 降低免疫力，并维持低下状态
            • 前5d，耳缘静脉注射阿糖胞苷440mg·m-²
            • 6d后隔日注射1次
          • 将兔子麻醉固定于手术台，用拇指和食指固定气管
          • 用皮气管直接刺入兔的气管
          • 并向气管内注入0.2mL（含1×108个)菌液
          • 取头高脚低位，菌液可因重力的作用顺利到达下气道
      • 皮肺穿刺法
        • 选体：3周龄的SD大鼠
        • 对右侧胸部进行酒精消毒
        • 菌液接种
          • 用剂浓度：浓度为10'CFU·mL-1的3型肺炎链球菌
          • 方法：用29号胰岛素注射器对准右侧胸肺正中部进行菌液接种
        • 在注射的过程中观察有无气胸的发生
      • 雾化吸入法
        • 人型结核分支杆菌H37RV
          • 基础：在Miaale brook设计原型的基础上自制雾化吸入装置来建立动物模型
          • 雾化装置
            • 气动预热
            • 雾化
            • 换气
            • 杀毒
          • 选体：质量为20～25g的BALB/C小鼠10只
          • 菌液接种
            • 菌液：人型结核分支杆菌H37RV
            • 浓度：1x10^6CFU·mL﹣¹
        • 小鼠侵袭性肺曲霉菌
          • 选体：小鼠
          • 免疫低下用剂：环磷酰胺和醋酸可的松
          • 利用感染吸入装置(原理同雾化吸入装置)进行菌液的接种
        • 肺炎链球菌
          • 将Wistar大鼠分为假手术组及脾脏切除组，将细菌悬液加入超声雾化器中
          • 以1ml/min的速度雾化送入汽雾箱，动物置于汽雾箱中自主呼吸吸入肺炎球菌30min
          • 吸入结束后，6h和24h取肺组织，10%福尔马林血管内固定，石蜡包埋，常规切片
          • HE染色后组织学观察，可见假手术组动物肺组织呈典型肺炎菌肺炎病变过程，肺泡中有纤维素性渗出，中性粒细胞浸润，红细胞数量少
        • 白念珠菌
          • 置于自制的密闭雾化箱中，将制备的菌液20m1倒入雾化杯中
          • 调整雾化量，连续雾化吸入至雾化液无残留，最终成功复制白念珠菌感染模型
      • 滴鼻法
        • 肺炎链球菌步骤
          • 第一种
            • 选体：CBA/J小鼠
            • 操作：经鼻滴入10^6CFU/mL的菌液
            • 结果：感染后小鼠3周内全部死亡，所得鼠模型病理学特点与人相似
          • 第二种
            • 选体：BALB/C小鼠
            • 麻醉，后用无菌卡介苗接种针头刺破鼻粘膜后滴入配好的菌液50ul(菌量3×10^7CFU）直接滴入小鼠鼻孔，待其自然吸收
        • 肺炎克雷伯杆菌步骤
          • 免疫低下模型——环磷酰胺
          • 以鼻腔滴入的方式接种菌液0.05ml（1×10^7CFU/鼠），接种后使小鼠处于垂直位2min左右
        • 白念珠菌
          • 一次性腹腔注射环磷酰胺200mg/kg，在免疫抑制的第4天开始，麻醉小鼠，使其保持直立位
          • 用枪头吸取制备的白念珠菌悬液40μ1缓慢交替滴入小鼠两侧鼻孔，至菌液完全吸收
        • 肺炎衣、支原体步骤
          • 第一种
            • 选体：16~22g的BALB/C小鼠
            • 分别在0d、1d、2d用乙醚麻醉后
            • 将制备好的浓度为1×10^7CFU·mL﹣¹的菌液缓慢滴入小鼠鼻腔
            • 使其进入气管支气管
            • 在操作过程中要防止菌液流入食道，以免灭活菌液
          • 第二种
            • 远系交配鼠龄为2个月左右的ICR雄性小鼠
            • 用乙醚吸入轻度麻醉小鼠，诱导小鼠过度通气以便于鼻内接种
            • 每只小鼠用带有4号半针头的注射器于吸气相时向鼻孔内滴入数滴（0.05mL）接种物
      • 其他
        • 卡式肺孢子虫
          • 在昆明种小鼠饮水中加入醋酸地塞米松片，计量分别为2.5mg/L、5mg/L、7.5mg/L，同时饮水中加入1g/L的四环素预防继发性细菌感染，饮水不限量
          • 4周查到滋养体，7周查到包囊，第10周肺组织出现典型的间质性肺炎病理改变，成功建立了PCP模型
        • 肺炎衣、支原体
          • 静脉接种组
            • 先将小鼠固定于简易小盒内，常规消毒后，通过尾静脉注射接种物0.05mL
            • 实验组中鼻内接种的每只小鼠给予约7.0×10'IPU/ml的肺炎衣原体
            • 静脉内接种的每只小鼠给予约9.7×10IFU/m1的肺炎衣原体
          • 远系交配鼠龄为2个月左右的ICR雄性小鼠
        • 流感病毒肺部感染
          • 使用ICR小鼠，在给药同时按10ml·kg~'sc环磷酰胺（10mg·kg一），每日1次，共2d，造成免疫低下模型
          • 除空白对照组、环磷酰胺对照组外，其余各组小鼠用乙醚轻度麻醉，以15个LD50流感病毒液（FM1株）滴鼻感染，每只35u L