导图社区 肺部感染模型
这是一篇关于肺部感染的思维导图,主要内容有发病原因、惑沈类型、模型建立。喜欢的小伙伴们可以点个赞哦!
编辑于2022-05-07 01:38:16肺部感染
发病原因
手术感染
术后呼吸机使用
术后机体抵抗力低下
伤口局部炎性渗出
进食吸水误吸
感染类型
细菌性感染
做痰培养明确诊断,并使用抗生素进行抗炎治疗
真菌性感染
明确后积极使用氟康挫等抗真菌药物治疗
病毒性感染
模型建立
免疫低下肺部感染
免疫低下
激素注射法
环磷酰胺
选择体质量16~20g的BALB/C雌性小鼠
环磷酰胺80mg·kg﹣¹连续腹腔注射3d
一定周期适时强化(每周剂量相同)
糖皮质激素
抑制作用
抑制巨噬细胞对抗原的吞噬和处理
小剂量糖皮质激素抑制细胞免疫
大剂量则选择性作用于T细胞亚群,特别是增强Ts抑制B细胞作用,并使免疫器官脾和胸腺重量减轻
氢化可的松(HY)
6~8周龄的昆明种小鼠
组肌内注射HY40mg/kg·bw,隔天1次
注射5次后,造成小鼠免疫低下动物模型
在非特异性免疫方面造模较为成功
地塞米松
使用地塞米松0.8mg/mL每天腹腔注射昆明小鼠0.2mL/只
给药7天后造成小鼠免疫功能低下
鼠白血病病毒
抑制作用
鼠白血病病毒属于逆转录病毒科
将它接种于敏感鼠可导致脾和淋巴结增大,免疫抑制和机会性感染等症状
第一种
使用10%脾病毒悬液(FLV病毒),用生理盐水稀释125倍作为病毒攻击液
ip病毒攻击液BALB/c种小鼠0.5mL/只,成功复制出免疫低下模型
第二种
将所制备的L6565病毒悬液按0.1m1/只皮下注射于出生24h内的乳鼠背部
次日重复注射1次,4周后成功制备出免疫低下小鼠模型
第三种
用C57BL/6小鼠腹腔接种LP-BM5MuLV
4周后小鼠出现明显的脾肿大和免疫缺陷
且症状的严重程度与接种的剂量呈正相关
其他
环孢素A
(CsA)6mg/(kg·d),连续腹腔注射BALB/c种小鼠
给药7d,腹腔注射容积为2.5m1/100g
氟苯尼考
通过采用氟苯尼考成功诱导BALB/c种小鼠免疫抑制模型
放射法
照射仪器:137C8源
选择体质量30~34g的昆明种小鼠
采用一次性照射
照射时间
3.31min—3Gy
4.42min—4Gy
5.52min—5Gy
Cor射线
一次全身照射动物(吸收剂量为7Gy
吸收剂量率为0.51Gy/min
肺部感染
气管法模型的建立
气管直接滴入法
肺炎克雷伯杆菌
选体:SD雄性大鼠
麻醉后,颈部消毒、备皮无菌操作,暴露大鼠上段气管,用1m1注射器经气管滴入菌液
其中,观察组滴入0.15m1,模型组滴入0.3ml,对照组滴入相同剂量的生理盐水
接种后立即竖立大鼠固定台,使大鼠保持直立位约20s,以保证接种菌液因重力作用而入肺
白色念珠菌
选体:质量150~180g的磁性Wister大鼠
皮下注射醋酸考地松—大鼠免疫力低下
麻醉、颈部备皮、消毒
用手术剪暴露大鼠的上段气管
用1mL注射器注射适当的白色念珠菌的菌液
接种后立即竖立大鼠固定台,使大鼠保持直立位约20s
并左右摇晃固定台,保证菌液均匀分布于两肺
气管导管插管法
幼龄SD大鼠肺炎克雷伯杆菌
选体:体质量在130~150g的SD大鼠
麻醉:第四天,将大鼠放入带有异氟醚棉球的小桶里进行麻醉
固定大鼠,用无菌的硅导管缓慢插入大鼠气管
插人一定深度后,注射0.2mL的肺炎克雷伯杆菌菌液进行接种
完毕后立即竖立固定台,使大鼠保持直立位20s左右
左右摇晃固定台,保证菌液分布于两肺
SD大鼠卡式肺孢子虫肺部感染
选体:雌性SD大鼠
用剂:皮下注射地塞米松磷酸钠
气管针头插管法(铜绿假单胞菌)
选体:质量为180~220g的SD大鼠,雌雄各半
麻醉:用20%的乌拉坦1.25g·kg~麻醉,后固定
用16号钝针头从口腔插入气管
左右旋转体位,使分布均匀于两肺
经皮气管插管法
选体:质量为2.0~2.5kg中国本种兔
降低免疫力,并维持低下状态
前5d,耳缘静脉注射阿糖胞苷440mg·m-²
6d后隔日注射1次
将兔子麻醉固定于手术台,用拇指和食指固定气管
用皮气管直接刺入兔的气管
并向气管内注入0.2mL(含1×108个)菌液
取头高脚低位,菌液可因重力的作用顺利到达下气道
皮肺穿刺法
选体:3周龄的SD大鼠
对右侧胸部进行酒精消毒
菌液接种
用剂浓度:浓度为10'CFU·mL-1的3型肺炎链球菌
方法:用29号胰岛素注射器对准右侧胸肺正中部进行菌液接种
在注射的过程中观察有无气胸的发生
雾化吸入法
人型结核分支杆菌H37RV
基础:在Miaale brook设计原型的基础上自制雾化吸入装置来建立动物模型
雾化装置
气动预热
雾化
换气
杀毒
选体:质量为20~25g的BALB/C小鼠10只
菌液接种
菌液:人型结核分支杆菌H37RV
浓度:1x10^6CFU·mL﹣¹
小鼠侵袭性肺曲霉菌
选体:小鼠
免疫低下用剂:环磷酰胺和醋酸可的松
利用感染吸入装置(原理同雾化吸入装置)进行菌液的接种
肺炎链球菌
将Wistar大鼠分为假手术组及脾脏切除组,将细菌悬液加入超声雾化器中
以1ml/min的速度雾化送入汽雾箱,动物置于汽雾箱中自主呼吸吸入肺炎球菌30min
吸入结束后,6h和24h取肺组织,10%福尔马林血管内固定,石蜡包埋,常规切片
HE染色后组织学观察,可见假手术组动物肺组织呈典型肺炎菌肺炎病变过程,肺泡中有纤维素性渗出,中性粒细胞浸润,红细胞数量少
白念珠菌
置于自制的密闭雾化箱中,将制备的菌液20m1倒入雾化杯中
调整雾化量,连续雾化吸入至雾化液无残留,最终成功复制白念珠菌感染模型
滴鼻法
肺炎链球菌步骤
第一种
选体:CBA/J小鼠
操作:经鼻滴入10^6CFU/mL的菌液
结果:感染后小鼠3周内全部死亡,所得鼠模型病理学特点与人相似
第二种
选体:BALB/C小鼠
麻醉,后用无菌卡介苗接种针头刺破鼻粘膜后滴入配好的菌液50ul(菌量3×10^7CFU)直接滴入小鼠鼻孔,待其自然吸收
肺炎克雷伯杆菌步骤
免疫低下模型——环磷酰胺
以鼻腔滴入的方式接种菌液0.05ml(1×10^7CFU/鼠),接种后使小鼠处于垂直位2min左右
白念珠菌
一次性腹腔注射环磷酰胺200mg/kg,在免疫抑制的第4天开始,麻醉小鼠,使其保持直立位
用枪头吸取制备的白念珠菌悬液40μ1缓慢交替滴入小鼠两侧鼻孔,至菌液完全吸收
肺炎衣、支原体步骤
第一种
选体:16~22g的BALB/C小鼠
分别在0d、1d、2d用乙醚麻醉后
将制备好的浓度为1×10^7CFU·mL﹣¹的菌液缓慢滴入小鼠鼻腔
使其进入气管支气管
在操作过程中要防止菌液流入食道,以免灭活菌液
第二种
远系交配鼠龄为2个月左右的ICR雄性小鼠
用乙醚吸入轻度麻醉小鼠,诱导小鼠过度通气以便于鼻内接种
每只小鼠用带有4号半针头的注射器于吸气相时向鼻孔内滴入数滴(0.05mL)接种物
其他
卡式肺孢子虫
在昆明种小鼠饮水中加入醋酸地塞米松片,计量分别为2.5mg/L、5mg/L、7.5mg/L,同时饮水中加入1g/L的四环素预防继发性细菌感染,饮水不限量
4周查到滋养体,7周查到包囊,第10周肺组织出现典型的间质性肺炎病理改变,成功建立了PCP模型
肺炎衣、支原体
静脉接种组
先将小鼠固定于简易小盒内,常规消毒后,通过尾静脉注射接种物0.05mL
实验组中鼻内接种的每只小鼠给予约7.0×10'IPU/ml的肺炎衣原体
静脉内接种的每只小鼠给予约9.7×10IFU/m1的肺炎衣原体
远系交配鼠龄为2个月左右的ICR雄性小鼠
流感病毒肺部感染
使用ICR小鼠,在给药同时按10ml·kg~'sc环磷酰胺(10mg·kg一),每日1次,共2d,造成免疫低下模型
除空白对照组、环磷酰胺对照组外,其余各组小鼠用乙醚轻度麻醉,以15个LD50流感病毒液(FM1株)滴鼻感染,每只35u L